本試劑盒以JC-10為特異性熒光探針，作為JC-1的升級款探針，兼具更高的水溶性、穩定性與檢測靈敏度，可快速、精準檢測活細胞及純化線粒體的膜電位 (ΔΨm) 變化，是細胞早期凋亡檢測的優質工具，操作簡便、抗干擾能力強、實驗重復性優異。JC-10相較傳統JC-1探針，無需有機溶劑助溶，水溶性更佳，有效降低非特異性染色，且熒光信號更穩定、淬滅速度更慢，適用于多種檢測平臺（熒光顯微鏡、激光共聚焦顯微鏡、流式細胞儀、熒光酶標儀等）。
JC-10的熒光特性隨線粒體膜電位水平呈電勢依賴性改變：在線粒體膜電位較高時，JC-10快速聚集于線粒體基質形成紅色熒光聚合物；當線粒體膜電位降低時，JC-10無法聚集，以單體形式分散于胞漿，產生綠色熒光?？赏ㄟ^熒光顏色的直觀轉變定性判斷線粒體膜電位變化，亦可通過紅綠熒光強度的相對比例，精準定量衡量線粒體的去極化程度。線粒體膜電位下降是細胞凋亡早期的標志性事件，本試劑盒可通過 JC-10紅、綠熒光的轉換，高效實現細胞早期凋亡的快速檢測；同時配套提供FCCP（碳酰氰-4-三氟甲氧基苯肼）——線粒體電子傳遞鏈專用解偶聯劑，作為誘導線粒體膜電位下降的陽性對照，為實驗結果的準確性提供可靠參考。
-20℃避光保存，盡量避免反復凍融，冰袋運輸，有效期1年。超純水和JC-10染色緩沖液(5×)也可4℃保存。
圖1 JC-10染色檢測FCCP處理后NIH/3T3細胞線粒體膜電位變化
1.JC-10 (200×) 為高濃度熒光探針，低溫下略有粘稠性，使用前可在20~25℃水浴溫育1~2分鐘，輕輕顛倒混勻后再稀釋，無需劇烈震蕩。
2.FCCP為線粒體電子傳遞鏈抑制劑，具有毒性且易揮發，操作時需在通風櫥內進行；穿實驗服、戴一次性手套和口罩，避免直接接觸皮膚、吸入或誤食；若不慎接觸，立即用大量清水沖洗接觸部位。
3.所有染色步驟及樣品保存均需避光操作，避免熒光淬滅；JC-10染色工作液現配現用，不可久置，配制后2h內完成染色。
4.用1×染色緩沖液洗滌細胞時，需保持緩沖液在4℃左右（冰?。商岣呦礈煨Ч?，減少非特異性染色；洗滌操作動作輕柔，避免細胞脫壁（貼壁細胞）或破裂（懸浮細胞）。
5.JC-10探針裝載并洗滌后，需在60分鐘內完成所有熒光檢測，檢測前樣品置于冰浴保存，避免線粒體膜電位發生人為改變，影響結果準確性。
6.請勿將JC-10染色緩沖液(5×)全部配制成1×緩沖液，本試劑盒中染色工作液的配制需直接使用5×原液，否則會影響JC-10的聚集特性。
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Q1：JC-10 試劑溶解后出現輕微渾濁怎么辦？
a.低溫導致探針輕微聚集，需將 JC-10 (200×) 在 20~25℃水浴溫育片刻，輕輕顛倒混勻后再稀釋。
b.配制時超純水加入量不足，嚴格按照8 mL超純水中加入50 μL JC-10 (200×)的比例稀釋，避免濃度過高導致渾濁。
c.試劑反復凍融失效，需避免JC-10試劑反復凍融，使用新鮮的試劑盒組分。
Q2：視野中背景熒光過高、信號模糊怎么辦？
a.洗滌不充分，需用4℃冰浴的JC-10染色緩沖液(1×)多洗滌1次，離心操作規范避免細胞碎片殘留。
b.JC-10工作液配制后久置，需現配現用JC-10染色工作液，配制后立即進行染色操作。
c.細胞培養狀態差，需使用對數生長期的細胞，避免細胞過度融合或自然凋亡。
Q3：紅綠熒光比值變化不明顯怎么辦？
a.凋亡誘導不充分，需優化誘導劑濃度和作用時間，延長細胞處理時長。
b.檢測參數未優化，確保紅色通道未飽和、綠色通道靈敏度足夠，調整設備曝光參數。
c. 試劑可能失效，需使用新鮮配制的JC-10工作液和FCCP陽性對照試劑。
Q4：FCCP陽性對照未出現綠色熒光怎么辦？
a.FCCP濃度過低或作用時間不足，可提高FCCP濃度至20~50 μM 或延長作用時間至30~40分鐘。
b.FCCP試劑失效/揮發，需檢查FCCP保存條件（-20℃避光密封），使用新鮮稀釋的FCCP溶液，稀釋操作快速完成。
c.細胞對FCCP不敏感，需參考相關文獻優化陽性對照處理條件，適當提高FCCP作用濃度，或更換細胞系驗證。
Q5：熒光信號淬滅速度過快怎么辦？
a.檢測時間過長，JC-10探針洗滌后需在30分鐘內完成所有熒光檢測，減少樣品暴露時間。
b.未避光操作，所有染色、洗滌和檢測步驟均需全程避光，樣品檢測前冰浴保存。
c.熒光檢測設備參數不當，可適當提高檢測增益，根據 JC-10 的波長特性調整濾光片參數。
Q6：貼壁細胞染色后脫壁嚴重怎么辦？
a.洗滌操作過于劇烈，吸除上清和加入緩沖液時動作輕柔，避免直接沖擊細胞層。
b. 細胞貼壁性差，可提前使用多聚賴氨酸包被培養板，增強細胞貼壁能力。
c.離心操作導致細胞脫落，貼壁細胞直接原位洗滌，無需離心處理。
Q7：懸浮細胞離心后易丟失、沉淀不完整怎么辦？
a.離心轉速或時間不足，需嚴格按照600×g、4℃離心3~4分鐘，避免轉速過低或離心時間過短。
b.棄上清時操作不當，棄上清時保留少量上清液，避免吸除細胞沉淀，重懸時輕輕吹打。
c.細胞濃度過低，可適當提高離心的細胞數量，確保細胞沉淀量充足。
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